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大鼠大腦皮層神經元細胞培養實驗——機械性劃割培養

時間:2021/12/5閱讀:1435
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材料與儀器

SD大鼠
硼酸硼砂緩沖液 胰酶-EDTA 消化液 D-Hanks’
眼科剪 滴管 離心機 培養皿 CO2培養箱

步驟


一、實驗步驟
 
1. 孕16 d SD 大鼠經戊巴(匕匕)妥鈉麻醉后,碘酒、75%乙醇消毒腹部皮膚,依次剪開皮膚、肌肉、皮下筋膜,無菌操作下取出胚胎放入預冷的D-Hanks’平衡鹽液中。
 
2. 在解剖顯微鏡下分離并取出胚胎大腦皮層,除去腦膜,剪碎組織成約1mm3 大小,加入胰酶-EDTA 消化液并放入 37℃孵箱內消化20 min,中間搖晃一次。
 
3. 隨后用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的培養液(DMEM+10%FBS)的離心管內終止消化液作用5 min。
 
4. 用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的 DMEM+10%FBS 的離心管內,用火焰拋光的巴斯德滴管吹打數次,靜置后取上清吸到另一支離心管內。重復上述步驟 2~3 次。
 
5. 將所收集的上清經200 目篩網過濾。
 
6. 過濾后的細胞懸液于800 rpm 離心5 min,棄上清,管內加入新鮮培養液(DMEM+20%FBS)并吹打 成單細胞懸液。
 
7. 細胞計數,調整細胞密度按1.5x105/cm2  種入6 孔板內,放入CO2 孵箱中培養。培養48 h 后換液并 加入Ara-C使其終濃度為 1x10-5 mM/L。Ara-C作用24 h 后全量換液。以后每隔 3 天半量換液一次。


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