蛋白定量是蛋白分離和分析前必須的一個重要步驟，蛋白色譜分離、蛋白質電泳分析、蛋白質免疫分離和分析、細胞裂解釋放的總蛋白定量、蛋白分子的標記、蛋白結構分析等，都需要可靠的定量分析作為基礎。蛋白定量分析應用的領域包括生物科學，食品檢驗，臨床檢驗等等。蛋白質定量有哪些方法？讓我們一起來看看吧！
一、比色法
蛋白定量常使用的方法是比色法，通常用于總蛋白的定量分析。根據蛋白和比色試劑的結合，可以將比色法分為：蛋白-染料結合法和蛋白-銅螯合化學試劑法。前者對應的典型蛋白定量比色法是考馬斯亮藍G250染料結合法，后者則包括雙縮脲法，Lowry法，二喹啉甲酸（BCA）法。
1、Bradford法
Bradford法也稱作考馬斯亮藍法，是由Bradford于1976年建立的。該方法的原理是蛋白在酸性條件下和考馬斯染料結合，染料的最大吸收值發生改變，從465nm轉移為610nm，并且在595nm處有最大的吸收差異。結合到蛋白質分子上的染料數與蛋白所帶正電荷成正比，因此可以用該方法來對蛋白進行定量。染料的顏色變化和蛋白中的堿性氨基酸（精氨酸、賴氨酸和組氨酸）有關，另外范德華力和疏水作用也會影響蛋白與染料的結合。
2、 BCA法
BCA (bicinchonininc acid) 1985年Paul K. Smith等人開發出BCA方法，該方法分為兩步：首先，在堿性條件下，蛋白將二價銅離子還原為一價銅離子，然后，BCA和一價銅離子結合，形成紫色化合物，該化合物在562nm時有最大吸收，且吸收值與蛋白濃度呈線性相關。
二、紫外法
紫外法也是常用的蛋白定量方法之一，該方法在簡單的分光光度計中就可以定量測定溶液中蛋白質的含量。蛋白質對近紫外光的吸收依賴于酪氨酸（Tyr）和色氨酸（Trp）含量，同時在很小的程度上也會受到苯丙氨酸（Phe）和二硫鍵數量的影響。因此，蛋白質之間A280的吸收值相差很大，對于濃度為1 mg/mL的溶液，從0到4的數值都有，大多蛋白的吸收值在0.5 - -1.5的范圍之間。
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