蔗糖磷酸化酶（Sucrose Phosphorylase, SP）試劑盒說明書
分光光度法 50 管/48 樣
正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：
SP(EC2.4.1.7)主要存在于微生物和植物中，裂解葡萄糖苷鍵，催化葡萄糖基轉移到果糖、木糖、半乳糖和鼠李糖等，合成相應的葡萄糖基低聚糖。此外，SP 還能催化氫醌合成熊果苷，具有ji強的美白效果，在化妝品工業中具有重要應用。
測定原理：
SP 能夠以磷酸為受體，催化蔗糖產生 1-磷酸葡萄糖，在葡萄糖磷酸變位酶催化下變位為 6-磷酸葡萄糖，在 6-磷酸葡萄糖脫氫酶作用下還原NADP+生成NADPH，導致 340nm 光吸收值增加。測定 340nm 吸光度增加速率，即可計算SP 活性。
組成：
產品名稱 | BF6017-50T/48S | Storage |
提取液：液體 | 50ml | 4℃ |
試劑一：液體 | 35ml | 4℃ |
試劑二：粉劑 | 1 瓶 | -20℃避光 |
試劑三：粉劑 | 1 瓶 | -20℃避光 |
說明書 | 一份 |
試劑二：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存，臨用前加 6ml 蒸餾水溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。
試劑三：粉劑×1 瓶，-20℃避光保存，臨用前加 12ml 蒸餾水水溶解；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。
自備儀器和用品：
天平、低溫離心機、恒溫水浴鍋、紫外分光光度計、1 ml 石英比色皿和蒸餾水。
粗酶液提取：
1. 組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液）進行冰浴勻漿，然后 10000g，4℃，離心 10min，取上清待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數量（104 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1ml 提取液），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 10000g， 4℃，離心 10min，取上清置于冰上待測。
測定步驟：
1. 分光光度計預熱 30min，調節波長至 340nm，蒸餾水調零。
2. 操作表
試劑名稱 | 對照管 | 測定管 |
試劑一（μl） | 600 | 600 |
試劑二（μl） | 100 | 100 |
試劑三（μl） | 200 | 200 |
樣本（μl） |
| 100 |
蒸餾水（μl） | 100 |
|
迅速混勻，于 1ml 石英比色皿，37℃下測定 340nm 的初始吸光值與反應 2min 后的吸光 值，測定管記作A1 與A2，對照管記作A3 與A4，△A=（A2- A1）-（A4- A3）。 |
SP 活性計算公式:
1. 按照蛋白濃度計算
酶活定義：37℃，pH6.8 時，每毫克蛋白質每分鐘催化產生 1nmol NADPH 為一個酶活單位。
SP 活性（nmol/min/mg prot）=
2. 按照樣本質量計算
DA
e′ d
×V 反總÷V 樣÷Cpr÷T=804×△A÷Cpr
酶活定義：37℃，pH6.8 時，每克樣本每分鐘催化產生 1nmol NADPH 為一個酶活單位。
SP 活性（nmol/min/g 鮮重）=
3. 按照細胞數量計算
DA
e′ d
×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×W)÷T=804×△A÷W
酶活定義：37℃，pH6.8 時，每 104 個細胞每分鐘催化產生 1nmol NADPH 為一個酶活單位。
SP 活性（nmol/min/104 cell）=
個）
DA
e′ d
×V 反總÷(V 樣÷V 樣總×細胞數量（萬個）)÷T=804×△A÷細胞數量（萬
e：NADPH 摩爾消光系數，6220 L/mol/cm；d：比色皿光徑，1cm；V 反總：反應體系總體積，1ml；V 樣：反應體系中樣本體積，0.1ml；W：樣本質量，g；Cpr：蛋白濃度，mg/ml；V 樣總：加入提取液體積， 1ml；T：反應時間，2min
注意事項:
1. 可選用BCA 法測定蛋白含量試劑盒測定蛋白含量。
2. 樣本較多時，可以按照每個樣本試劑一：試劑二：試劑三=600：100：200（μl）的比例配制工作液，用多少配多少，臨用前立刻配制，10 分鐘內使用。
