在遺傳毒理學與細胞生物學研究中，精確檢測 DNA 損傷對于揭示環境化學物質毒性、評估輻射危害以及理解細胞應激反應機制具有關鍵意義。彗星法（Comet Assay），作為一種靈敏且直觀的單細胞凝膠電泳技術，在 DNA 損傷檢測領域占據重要地位。
DNA 損傷涵蓋多種類型，包括堿基損傷、DNA 單鏈斷裂（SSB）、雙鏈斷裂（DSB）以及 DNA 交聯等。這些損傷若得不到及時修復，可能引發基因突變、染色體異常甚至細胞癌變。彗星法聚焦于檢測 DNA 單鏈與雙鏈斷裂，通過可視化單個細胞內的 DNA 遷移情況，實現對 DNA 損傷程度的定性和定量分析。
將待測細胞懸液與低熔點瓊脂糖混合，滴加在預先涂有一層正常熔點瓊脂糖的玻片上。低熔點瓊脂糖的作用是包裹細胞，為后續的凝膠電泳提供支撐。正常熔點瓊脂糖則作為底層，增強玻片的吸附力。細胞濃度需控制在 [適當濃度區間]，濃度過高會使細胞密集，影響電泳遷移效果；濃度過低則細胞信號稀疏，降低檢測靈敏度。
將玻片浸泡于細胞溶解液中，該溶液包含高濃度的鹽與去污劑。細胞溶解液通過破壞細胞膜與核膜，使細胞內容物釋放，同時去污劑能夠溶解細胞內的蛋白質，包括組蛋白與非組蛋白。在 [處理溫度區間] 下孵育 [處理時長區間]，確保 DNA 全部釋放并與蛋白質充分分離。此步驟需嚴格控制時間和溫度，避免過度處理導致 DNA 過度降解，產生假陽性結果；處理不足則 DNA 與蛋白質結合緊密，影響后續電泳遷移。
將玻片置于水平電泳槽中，加入電泳緩沖液，確保玻片全部浸沒。通電后，DNA 片段帶負電，在電場作用下向陽極遷移。DNA 損傷程度越重，單鏈或雙鏈斷裂片段越多，遷移速度越快，在凝膠中形成拖尾狀結構，形似彗星。完整的 DNA 則遷移緩慢，位于彗頭部。電場強度需維持在 [電場強度區間]，過高會使 DNA 遷移過快，彗頭與彗尾界限模糊，難以分辨；過低則遷移速度過慢，延長電泳時間，可能導致 DNA 擴散過度，影響結果準確性。
電泳結束后，用 DNA 染色劑（如溴化乙錠或 SYBR Green）染色。染色劑與 DNA 結合，在紫外光下發出熒光。使用熒光顯微鏡觀察并拍攝彗星圖像。彗星的形態特征直接反映 DNA 損傷程度：彗頭熒光強度代表完整 DNA 的含量，彗尾熒光強度與 DNA 斷裂片段的總量相關，彗尾長度則與 DNA 片段的大小分布有關。
不同細胞類型對彗星法的適用性存在差異。對于貼壁細胞，需先進行胰蛋白酶消化使其脫落，過程要溫和，避免細胞膜破損導致 DNA 損傷假陽性。懸浮細胞則可直接離心收集，但要注意防止細胞團聚。在檢測輻射誘導的 DNA 損傷時，細胞在輻射后需在 [特定時間區間] 內迅速進行彗星法檢測，因為細胞內 DNA 修復機制會隨時間修復損傷，延遲檢測可能導致損傷信號減弱。對于化學物質誘導的 DNA 損傷，細胞需與化學物質孵育 [特定時長區間]，使化學物質充分作用于細胞，產生可檢測的 DNA 損傷水平。
彗星法在遺傳毒理學研究中可用于評估環境化學物質的 DNA 損傷效應。例如，在檢測新型農藥的潛在遺傳毒性時，將細胞暴露于不同濃度農藥中，通過彗星法檢測 DNA 斷裂程度與農藥濃度之間的劑量 - 效應關系，為農藥的安全性評價提供重要依據。在癌癥研究領域，彗星法可監測腫瘤細胞對化療藥物的 DNA 損傷反應，通過比較不同化療藥物處理后彗星圖像的熒光強度與彗尾長度，篩選出對腫瘤細胞 DNA 損傷效果更顯著的藥物，為個性化化療方案的制定提供指導。
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