Folin-酚試劑法（Lowry法）測定蛋白質含量
一、實驗原理
蛋白質含有兩個以上的肽鍵（—CO—NH）,因此有雙縮脲反應，在堿性溶液中，能與CU2+ 形成絡合物。Folin-酚試劑反應是在雙縮脲反應的基礎上，引進Folin試劑（磷鉬酸-鎢酸試劑）,蛋白質-銅絡合物能還原磷鉬酸-磷鎢酸試劑，生成藍色物質。在一定條件下，藍色強度與蛋白質的量成正比例。
本法的優點是操作簡便、靈敏度高、較此外吸收法靈敏10~20倍，較雙縮脲法靈敏100倍，反應約在15min內有zui大顯色，并至少可穩定幾小時。其不足之處是此反應受多種因素干擾。對雙縮脲反應發生干擾的基團，Tris.HCL緩沖劑以及蔗糖、硫酸銨、巰基化合物，酚類及檸檬酸，均對此反應有干擾作用。在測試時應排隊干擾因素或做空白實驗消除。含硫酸銨的溶液只需加濃Na2CO3-NaOH溶液即可顯色測定。若樣品酸度較高，顯色后色淺，則必須將Na2CO3-NaOH溶液的濃度提高1~2倍。
本法可測定范圍是25~250µg蛋白質。
二、實驗用品
（一）器材
（1）722型分光光度計。
（2）恒溫水浴鍋。
（3）試管及試管架。
（4）0.5ml，1ml及5ml移液管
（1）試劑甲。
（A）4%Na2CO3溶液；
（B）0.2mol/LNaOH溶液；
（C）2%酒石酸鉀鈉溶液（或酒石酸鉀、酒石酸鈉）；
（D）1% CuSO4.5H2O溶液；
臨用前將（A）:（B）:（C）:（D）=50:50:1:1(體積比)混合，此混合液即為試劑甲。混合后的溶液1d內有效。
（2） Folin-酚試劑(試劑乙)：在1.5L容積的磨口回流瓶中加入100g鎢酸鈉（Na2WO4.2H2O），25g鉬酸鈉（（Na2MoO4.2H2O），及700ml蒸餾水，50ml 85%磷酸，100ml濃鹽酸充分混合，燒瓶內加小玻璃珠數顆，以防溶液溢出，接上回流冷凝管以文火回流10h。回流結束后，加入150g硫酸鋰（LiSO4）,50m重蒸水及數滴液溴，開口繼續沸騰15min，以除去多余的溴。冷卻后溶液呈金黃色（如果仍呈綠色，須再重復滴加溴水的步驟），定容至1L，過濾，濾液置棕色瓶中保存，可在冰箱長期保存。若此貯存液使用過久，顏色由黃變綠，可加幾滴液溴，煮沸數分鐘，恢復原色仍可繼續使用。使用時用標準NaOH滴定酸度，以酚酞為指示劑。該試劑的酸度應為2mol/L左右，將之稀釋至相當于1mol/L酸度使用，即為Folin-酚試劑。
（3）標準蛋白質溶液：可用結晶牛血清蛋白，預先經微量凱氏定氮法測定蛋白質含量，再根據其純度配制成500µg蛋白/ml溶液。
（三）材料
血清使用前稀釋100倍或約含20~250µg蛋白/ml溶液。
三、實驗程序
一、操作方法
1.蛋白濃度標準曲線制作
取14支試管，分兩組按表9-1平行操作。
繪制標準曲線：以OD650值為縱坐標，標準蛋白量為橫坐標，在坐標紙上繪制標準曲線。
2.樣品溶液蛋白質濃度測定
取6支試管，分兩組，按表9-2平行操作。
3、計算
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