細胞傳代的操作步驟

細胞傳代是指去除原培養基，將細胞從原培養體系轉移到新鮮的生長培養基中，目的是使細胞得到進一步增殖。依據細胞是否貼壁生長，又分成貼壁細胞傳代和懸浮細胞傳代。下面分別介紹這2種生長類型的細胞具體傳代步驟。

貼壁細胞傳代
貼壁細胞需要用到一種特定的試劑——蛋白酶，其作用是切斷細胞和容器之間，細胞與細胞之間的相互粘連，用蛋白酶處理細胞的過程叫做“消化”，“消化”之后的下撥會形成單細胞并從容器底部掉下來。常用的蛋白酶是胰蛋白酶。

材料準備：

1、預熱培養用液：把已經配制好的裝有培養液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴鍋內預熱；

2、用75%酒精擦拭經過紫外線照射的超凈工作臺和雙手；

3、正確擺放使用的器械：保證足夠的操作空間，不僅便于操作而且減少污染；

4、點燃酒精燈：注意火焰不能太小。

傳代流程：

1. 取出預熱好的培養用液：取出已經預熱好的培養用液，用酒精棉球擦拭好后方能放入超凈臺內。

2. 從培養箱內取出細胞：注意培養瓶取出細胞時要旋緊瓶蓋，用酒精棉球擦拭顯微鏡的臺面，再在鏡下觀察細胞。

3. 將培養瓶放入超凈工作臺后打開瓶口，同時要在酒精燈上燒口消毒。

4. 加入消化液：小心吸出舊培養液，用PBS清洗（沖洗），加入適量消化液（胰蛋白酶液），注意消化液的量以蓋住細胞較好好，消化溫度是37℃。

5. 顯微鏡下觀察細胞：倒置顯微鏡下觀察消化細胞，若胞質回縮，細胞之間不再連接成片，表明此時細胞消化適度。

6. 棄去胰蛋白酶液，加入新鮮的培養液終止反應。小心吹打成細胞懸液。

7. 將細胞懸液吸入10 ml離心管中。平衡后將離心管放入離心機中，以1000 rpm/min離心5 min。

8. 棄去上清液，加入適當體積的培養液，用滴管輕輕吹打細胞制成細胞懸液。

9. 將細胞懸液吸出分裝至2-3個培養瓶中，加入適量培養基旋緊瓶蓋。

10. 顯微鏡下觀察細胞：倒置顯微鏡下觀察細胞量，必要時計數。注意密度過小會影響傳代細胞的生長，傳代細胞的密度應該不低于5×105/ml。后要做好標記。

11. 繼續培養：用酒精棉球擦拭培養瓶，適當旋松瓶蓋，放入CO2培養箱中繼續培養。傳代細胞2-4 h后開始貼附在瓶壁上。

2. 懸浮細胞傳代

由于細胞已經在生長培養基中懸浮，所以無需酶的作用使其從培養容器表面脫離，方法簡單。通常有兩種方法。

材料準備：

1、裝有懸浮細胞的培養容器。

2、*生長培養基，預熱至37℃

3、37℃培養箱，充有二氧化碳濃度為5%的濕化空氣。

傳代流程：

一、直接傳代法

① 待懸浮細胞長滿至80%~90%（細胞懸液變黃），即可傳代；

② 用吸管吸棄細胞懸液1/2~1/3；

③ 加入適量的新鮮培養基，繼續培養。

二、離心傳代法（在發現有細胞碎片的情況下）

① 將細胞懸液轉移到離心管內；

② 150g離心5min，棄去上層清液；

③ 使用新鮮的培養基重懸細胞；

④ 吸管吸取適量細胞懸液，裝入新的培養瓶，再加入適量的新鮮培養基，繼續培養。