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單克隆抗體的克隆化方法概述

來源:上海滬鼎生物科技有限公司   2013年04月17日 09:59  

        

單克隆抗體的克隆化方法

    經過抗體測定的陽性孔,可以擴大培養,進行克隆,以得到單個細胞的后代分泌單克隆抗體。克隆的時間一般說來越早越好。因為在這個時期各種雜交瘤細胞同時旺盛生長,互相爭奪營養和空間,而產生抗體的細胞有被淹沒和淘汰的可能。但克隆時間也不宜太早,太早細胞性狀不穩定,數量少也易丟失。
    克隆化的陽性雜交瘤細胞,經過一段時期培養之后,也還會因為細胞突變或特定染色體的丟失,使部分細胞喪失產生抗體的能力,所以需要再次或多次克隆化培養。克隆化次數的多少由分泌能力強弱和抗原的免疫性強弱而決定。一般說,免疫性強的抗原克隆次數可少一些,但至少要3~5次克隆才能穩定。
克隆化的方法很多,包括有限稀釋法、顯微操作法、軟瓊脂平板法及熒光激活分離法等。
   (一)有限稀釋法
    1.材料
   (1)微量培養盤,盤內各孔于克隆化前一天培養小鼠腹腔細胞(即飼養細胞)每孔2萬~4萬。
   (2)HT培養基
    2.操作方法
   (1)取出抗體陽性孔細胞,用HT培養液制成細胞懸液。并取樣進行臺盼蘭染色,計數。
   (2)用HT培養液將細胞稀釋成200個/ml、40個/ml、20個/ml和的懸液。
   (3)用吸管將細胞懸液分別種入微量培養盤,每孔0.05ml,細胞含量分別為10個/孔、2個/孔、1個/孔和0.5個/孔。
   (4)5%CO2飽和濕度,37℃培養。
   (5)每天用倒置顯微鏡觀察克隆生長情況,選擇只有一個集落生長的孔,棄掉兩個以上和沒有細胞生長的孔。
   (6)克隆大量繁殖后,布滿孔底的1/3~1/2時,測培養液抗體。
   (7)抗體陽性孔細胞,移到有飼養層的組織培養瓶中,并傳2~4代就可以脫離飼養細胞,建成克隆株。
   (二)軟瓊脂克隆化
    借助撒在軟瓊脂上單個細胞定位生長,而達到克隆化,具體操作如下:
    1.配2.5%的瓊脂糖30ml,水浴溶化后,移入45℃水浴中。
    2.將117ml*DMEM液和3ml 10倍濃度的DMEM液混合,置45℃水浴預熱。
    3.將瓊脂糖與DMEM液混合,即為含0.5%瓊脂糖的*DMEM液,并加75×108 脾細胞。
    4.每塊平皿加10ml,于室溫中凝固。
    5.DMEM中的細胞與DMEM—瓊脂1:1混合,將細胞瓊脂混合物2ml鋪于凝固的平板上,使其全部覆蓋。
    6.放入CO2箱飽和濕度,37℃培養10天。
    7.用PBS配制0.6%瓊脂糖,于沸水浴溶解后,置45℃,在保溫情況下取一試管,迅速加入0.1ml 25%羊紅血球,0.2ml豚鼠補體,2.7ml 0.6%瓊脂糖。
    8.用3ml瓊脂糖—羊紅血球混合液覆蓋克隆。于37℃CO2箱孵育1h~2h。從克隆上部溶解羊紅血球的溶血范圍,可篩選抗羊紅血球Ig。
    (三)顯微鏡操作法
    在直徑6cm培養皿中,加入1ml 1.0×108細胞懸液放置5%CO2飽和濕度,37℃溫箱中放置30min以上,倒置顯微鏡下,尋找那些與周圍相距甚遠的單個細胞,將毛細管口(一頭有直角彎頭毛細管,一頭連接一尺長乳膠管,用口控制液體進入)水平置放于液面上,左右微動,直到看見管口,對準細胞,吸入毛細管,將管中細胞移到預先加有2.0×104~5.0×104飼養細胞96孔板內,培養后,即可獲得單個細胞形成的克隆。
   (四)熒光激活分離法
用一種熒光激活細胞分類器(Fluorescein Activafed Cell Sorter,FACS)。其基本原理是:將細胞經熒光抗體染色后,經噴嘴形成單個細胞的線形液滴,在萊塞光激發下,熒光素發射熒光,此信號由光電倍增管接收,再結合細胞形態大小產生光散射信號,經電腦處理,產生信號并與預定的信號對比,根據細胞熒光強度及細胞大小不同,將細胞分成不同級別,在電場中發生偏離,而分別收集于不同容器中。

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