谷胱gan肽還原酶（glutathione reductase, GR）說明書

分光光度法 50 管/48 樣

谷胱gan肽還原酶

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

GR 是廣泛存在于真核和原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶，是谷胱gan肽氧化還原循環的關鍵酶之一（通常昆蟲中 GR 被TrxR 取代）。GR 催化NADPH 還原GSSG 生成GSH，有助于維持體內 GSH/GSSG比值。GR 在氧化脅迫反應中對活性氧清除起關鍵作用，此外GR 還參與抗壞血酸－谷胱gan肽循環途徑。

測定原理：

GR 能催化NADPH 還原GSSG 再生GSH，同時NADPH 脫氫生成NADP⁺；NADPH 在 340 nm 有特征吸收峰，相反NADP⁺在該波長無吸收峰；通過測定 340 nm 吸光度下降速率來測定 NADPH 脫氫速率，從而計算GR 活性。

組成：

試劑二：粉劑×2 瓶，-20℃保存。臨用前加入 3 ml 蒸餾水，混勻。試劑三：粉劑×2 支，-20℃保存。臨用前加入 1.5 ml 蒸餾水，混勻。

自備儀器和用品：

紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、移液器、1ml 石英比色皿和蒸餾水

粗酶液提取：

組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 15min，取上清，置冰上待測。

細菌、真菌：按照細胞數量（104 個）：提取液體積（ml）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1ml 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 8000g， 4℃，離心 15min，取上清置于冰上待測。

血清等液體：直接測定。

操作步驟：

分光光度計預熱 30 min，調節波長到 340 nm，蒸餾水調零。

試劑一置于 25℃（普通物質）或者 37℃（哺乳動物）中預熱 30min。

測定管：取 1ml 石英比色皿，依次加入 50μl 試劑三，100μl 試劑二， 750μl 試劑一，100μl 上清液，混勻，于 340nm 迅速測定初始吸光度和 180 s 吸光度，記為 A 測 1 和A 測 2，△A 測定管= A 測 1﹣A 測 2。 (注意加完上清液后迅速混勻測定)

計算公式：

按蛋白濃度計算

活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每毫克蛋白每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。

GR 酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109]÷[Cpr×V 樣]÷T

= 536×△A 測定管÷Cpr

按樣本質量計算

活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每克樣本每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。

GR 酶活(nmol/min/g 鮮重)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109] ÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T

= 536×△A 測定管÷W

(3) 按細胞數量計算

活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每 104 個細胞每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。

GR 酶活(nmol/min/104 cell)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109] ÷(細胞數量×V 樣÷V 樣總)÷T

= 536×△A 測定管÷細胞數量

（4）按液體體積計算

活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每毫升液體每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。

GR 酶活(nmol/min/ml)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109]÷×V 樣÷T

= 536×△A 測定管

ε：NADPH 摩爾消光系數6.22×103L/mol/cm；V 反總：反應體系總體積，1000μl=0.001 L；106：1 mol=1×106μmol； Cpr：上清液蛋白濃度（mg/ml）；V 樣：加入反應體系中上清液體積，100μl =0.1 ml；V 樣總：加入提取 液體積，1ml；W，樣本質量，g；T：反應時間，3 min。

注意事項：

樣品處理等過程均需要在冰上進行，且須在當日測定酶活力，勻漿液避免反復凍融；

試劑二和試劑三須現配現用，配制完后，置于冰上，未使用完的 4℃保存，三天內使用完。

測定前須先用 1～2 個樣做預實驗，哺乳動物組織一般須用試劑一稀釋 2～5 倍。

細胞中 GR 活性測定時，細胞數目須在 300 萬-500 萬之間，細胞中 GR 的提取時可加試劑一后研磨或超聲波處理，不能用細胞裂解液處理細胞。